Preview

Российский журнал детской гематологии и онкологии (РЖДГиО)

Расширенный поиск

Оптимизация методов сбора периферических гемопоэтических стволовых клеток у детей с онкологическими заболеваниями: обзор литературы

https://doi.org/10.21682/2311-1267-2020-7-2-78-85

Полный текст:

Аннотация

Трансплантация аутологичных гемопоэтических стволовых клеток (ауто-ТГСК) является стандартом лечения онкологических, гематологических, а также некоторых иммунных заболеваний, обеспечивая восстановление показателей крови после высокодозной химиотерапии. У детей успех проведения мобилизации и обеспечение сбора гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) особенно важен. Схемы мобилизации у детей решаются в индивидуальном порядке, что требует разработки и внедрения в практику рекомендаций по повышению эффективности мобилизации и сбора ГСК. Схемы мобилизации включают применение гранулоцитарного колониестимулирующего фактора в виде монотерапии или в сочетании с антагонистами CXCR4. Эти схемы оказываются неэффективными у некоторых детей, что требует повторной мобилизации или отказа от трансплантации, что негативно влияет на прогноз. При подготовке пациента к сбору ГСК необходимо учитывать всю предшествующую терапию, возраст пациента, массо-ростовые показатели, общее соматическое состояние. Заготовка необходимого количества ГСК позволит выполнить высокодозную терапию с последующей ауто-ТГСК и тем самым повысить эффективность лечения. Необходима оптимизация протокола мобилизации ГСК с большим уклоном на педиатрических пациентов, в котором будут чет- ко прописаны критерии проведения мобилизации, даны показания к данной процедуре и определены критерии технического сбора, что позволит добиться получения оптимального количества клеток CD34+, что обеспечит успех проводимого лечения.

Об авторах

Н. Г. Степанян
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия

Нара Гарегиновна Cтепанян, врач-трансфузиолог отдела афереза отделения детской трансплантации костного мозга и гемопоэтических стволовых клеток

Россия, 115478, Москва, Каширское шоссе, 23



Н. В. Сидорова
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия

заведующая отделением детской трансплантации костного мозга и гемопоэтических стволовых клеток

Россия, 115478, Москва, Каширское шоссе, 23



М. В. Рубанская
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия

к.м.н., старший научный сотрудник 2-го хирургического отделения НИИ детской онкологии и гематологии

Россия, 115478, Москва, Каширское шоссе, 23



Н. H. Тупицын
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия

д.м.н., профессор, заведующий лабораторией иммунологии гемопоэза НИИ клинической онкологии им. Н.Н. Трапезникова

Россия, 115478, Москва, Каширское шоссе, 23



Н. В. Матинян
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия

д.м.н., профессор, заведующая отделением анестезиологии-реанимации НИИ детской онкологии и гематологии

Россия, 115478, Москва, Каширское шоссе, 23



К. И. Киргизов
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия

к.м.н., заместитель директора по научной и образовательной работе НИИ детской онкологии и гематологии

Россия, 115478, Москва, Каширское шоссе, 23



С. Р. Варфоломеева
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России
Россия

д.м.н., профессор, заместитель директора по научной и лечебной работе – директор НИИ детской онкологии и гематологии аппарата управления

Россия, 115478, Москва, Каширское шоссе, 23



Список литературы

1. Владимирская Е.Б. Нормальное кроветворение и его регуляция. Клиническая онкогематология 2015;8(2):109–19.

2. Orkin S.H. Hematopoiesis: how does it happen? Curr Opin Cell Biol 1995;7(6):870–7. doi: 10.1016/0955-0674(95)80072-7.

3. Bennett C.L., Smith T.J., Weeks J.C., Bredt A.B., Feinglass J., Fetting J.H., Hillner B.E., Somerfi eld M.R., Winn R.J. Use of hematopoietic colony stimulating factors: the American society of clinical oncology survey. J Clin Oncol 1996;14(9):2511–20. doi: 10.1200/JCO.1996.14.9.2511.

4. Kiel M.J., Yilmaz O.H., Iwashita T., Yilmaz O.H., Terhorst C., Morrison S.J. SLAM family receptors distinguish hematopoietic stem and progenitor cells and reveal endothelial niches for stem cells. Cell 2005;121(7):1109–21. doi: 10.1016/j.cell.2005.05.026.

5. Barrett D., Fish J.D., Grupp S.A. Autologous and allogeneic cellular therapies for high-risk pediatric solid tumors. Pediatr Clin North Am 2010;57(1):47–66. doi: 10.1016/j.pcl.2010.01.001.

6. Civriz Bozdag S., Tekgunduz E., Altuntas F. The current status in hematopoietic stem cell mobilization. J Clin Apher 2015;30(5):273–80. doi: 10.1002/jca.21374.

7. Dreger P., Kloss M., Petersen B., Haferlach T., Loffl er H., Schmitz N. Autologous progenitor cell transplantation: prior exposure to stem cell-toxic drugs determines yield and engraftment of peripheral blood progenitor cell but not of bone marrow grafts. Blood 1995;86(10):3970–8. PMID: 7579368.

8. Sugrue M.W., Williams K., Pollock B.H., Khan S., Peracha S., Wingard J.R., Moreb J.S. Characterization and outcome of ‘hard to mobilize’ lymphoma patients undergoing autologous stem cell transplantation. Leuk Lymphoma 2000;39(5–6):509–19. doi: 10.3109/10428190009113381.

9. Schmitz N., Linch D.C., Dreger P., Goldstone A.H., Boogaerts M.A., Ferrant A., Demuynck H.M., Link H., Zander A., Barge A. Randomised trial of fi lgrastim- mobilised peripheral blood progenitor cell transplantation versus autologous bone-marrow transplantation in lymphoma patients. Lancet 1996;347(8998):353–7. doi: 10.1016/s0140-6736(96)90536-x.

10. Copland M., Alcorn M., Patton D., Doig A., Farrell E., Currie C., Sinclair J.E., Parker A., Douglas K.W. Signifi cantly lower cryopreservation volumes for PBSC collections using Spectra Optia(R) version 5 software compared with the MNC setting on COBE(R) Spectra, particularly when using plerixafor for mobilization. Blood 2010;116(21):825. doi: 10.1182/blood.V116.21.825.825.

11. Mendez-Ferrer S., Lucas D., Battista M., Frenette P.S. Haematopoietic stem cell release is regulated by circadian ascillatins. Nature 2008;452(7186):442–7. doi: 10.1038/nature06685.

12. Katayama Y., Battista M., Kao W.M., Hidalgo A., Peired J.A., Thomas S.A., Frennete P.S. Signals from the sympathetic nervous system regulate hematopoietic stem cell egress from bone marrow. Cell 2006;124(2):407–21. doi: 10.1016/j.cell.2005.10.041.

13. Sugiyama T., Kohara H., Noda M., Takashi N. Maintenance of the hematopoietic stem cell pool by CXCL12-CXCR4 chemokine signaling in bone marrow stromal cell niches. Immunity 2006;25(6):977–88. doi: 10.1016/j.immuni.2006.10.016.

14. Ulyanova T., Scott L.M., Priestley G.V., Jiang Y, Nakamoto B., Koni P.A., Papayannopoulou T. VCAM-1 expression in adult hematopoietic and nonhematopoietic cells is controlled by tissueinductive signals and refl ects their developmental origin. Blood 2015;106(1):86–94. doi: 10.1182/blood-2004-09-3417.

15. Winkler I.G., Sims N.A., Pettit A.R., Barbier V., Nowlan B., Helwani F., Poulton I.J., van Rooijen N., Alexander K.A., Raggatt L.J., Levesque J.P. Bone marrow macrophages maintain hematopoietic stem cell (HSC) niches and their depletion mobilizes HSCs. Blood 2010;116(23):4815–28. doi: 10.1182/blood-2009-11-253534.

16. Haas R., Mohle R., Fruhauf S., Goldschmidt H., Witt B., Flentje M., Wannenmacher M., Hunstein W. Patient characteristics associated with successful mobilizing and autografting of peripheral blood progenitor cells in malignant lymphoma. Blood 1994;83(12):3787–94. PMID: 751521.

17. Dingli D., Nowakowski G.S., Dispenzieri A., Lacy M.Q., Hayman S., Litzow M.R., Gastineau D.A., Gertz M.A. Cyclophosphamide mobilization does not improve outcome in patients receiving stem cell trans- plantation for multiple myeloma. Clin Lymphoma Myeloma 2006;6(5):384–8. doi:10.3816/CLM.2006.n.014.

18. Desikan K.R., Barlogie B., Jagannath S., Vesole D.H., Siegel D., Fassas A., Munshi N., Singhal S., Mehta J., Tindle S., Nelson J., Bracy D., Mattox S., Tricot G. Comparable engraftment kinetics following peripheral-blood stem-cell infusion mobilized with granulocyte colony-stimulating factor with or without cyclophosphamide in multiple myeloma. J Clin Oncol 1998;16(4):1547–53. doi: 10.1200/JCO.1998.16.4.1547.

19. Truong T.H., Prokopishyn N.L., Luu H., Guilcher GM.T., Lewis V.A. Predictive factors for successful peripheral blood stem cell mobilization and collection in children. J Clin Apher 2019;34(5):598–606. doi: 10.1002/jca.21738.

20. De Clercq E. Mozobil® (Plerixafor, AMD3100), 10 years after its approval by the US Food and Drug Administration. Antivir Chem Chemother 2019;27:2040206619829382. doi: 10.1177/2040206619829382.

21. Lee H.M., Wu W., Wysoczynski M., Liu R., Zuba-Surma E.K., Kucia M., Ratajczak J., Ratajczak M.Z. Impaired mobilization of hematopoietic stem/progenitor cells in C5-defi cient mice supports the pivotal involvement of innate immunity in this process and reveals novel promobilization eff ects of granulocytes. Leukemia 2009;23(11):2052–62. doi: 10.1038/leu.2009.158.

22. Levesque J.P., Liu F., Simmons P.J., Betsuyaku T., Senior R.M., Pham C., Link D.C. Characterization of hematopoietic progenitor mobilization in protease-defi cient mice. Blood 2014;104(1):65–72. doi: 10.1182/blood-2003-05-1589.

23. Dar A., Schajnovitz A., Lapid K., Kalinkovich A., Itkin T., Ludin A., Kao W.M., Battista M., Tesio M., Kollet O., Cohen N.N., Margalit R., Buss E.C., Baleux F., Oishi S., Fujii N., Larochelle A., Dunbar C.E., Broxmeyer H.E., Frenette P.S., Lapidot T. Rapid mobilization of hematopoietic progenitors by AMD3100 and catecholamines is mediated by CXCR4-depen- dent SDF-1 release from bone marrow stromal cells. Leukemia 2011;25(8):1286–96. doi: 10.1038/leu.2011.62.

24. Christopher M.J., Liu F., Hilton M.J., Long F., Link D.C. Suppression of CXCL12 production by bone marrow osteoblasts is a common and critical pathway for cytokine-induced mobilization. Blood 2009;114(7):1331–9. doi: 10.1182/blood-2008-10-184754.

25. Calandra G., McCarty J., McGuirk J., Tricot G., Crocker S.A., Badel K., Grove B., Dye A., Bridger G. AMD3100 plus G-CSF can successfully mobilize CD34+ cells from non-Hodgkin’s lymphoma, Hodgkin’s disease and multiple myeloma patients previously failing mobilization with chemotherapy and/or cytokine treatment: compassionate use data. Bone Marrow Transplant 2008;41(4):331–8. doi: 10.1038/sj.bmt.1705908.

26. Lie A.K., To L.B. Peripheral blood stem cells: transplantation and beyond. Oncologist 1997;2(1):40–9. PMID: 10388028. 27. Maschan A.A., Balashov D.N., Kurnikova E.E., Trakhtman P.E., Boyakova E.V., Skorobogatova E.V., Novichkova G.A., Maschan M.A. Effi cacy of plerixafor in children with malignant tumors failing to mobilize a suffi cient number of hematopoietic progenitors with G-CSF. Bone Marrow Transplant 2015;50(8):1089–91. doi: 10.1038/bmt.2015.71.

27. Modak S., Cheung I.Y., Kushner B.H., Kramer K., Reich L., Cheung N.K. Plerixafor plus granulocyte colony stimulating factor for autologous hematopoietic stem cell mobilization in patients with metastatic neuroblastoma. Pediatr Blood Cancer 2012;58(3):469–71. doi: https:10.1002/pbc.23132.

28. Morland B., Kepak T., Dallorso S., Sevilla J., Murphy D., Luksch R., Yaniv I., Bader P., Rößler J., Bisogno G., Maecker-Kolhoff B., Lang P., Zwaan C.M., Sumerauer D., Kriván G., Bernard J., Liu Q., Doyle E., Locatelli F. Plerixafor combined with standard regimens for hematopoietic stem cell mobilization in pediatric patients with solid tumors eligible for autologous transplants: two-arm phase I/II study (MOZAIC). Bone Marrow Transplant 2020. [Epub ahead of print]. doi: 10.1038/s41409-020-0836-2.

29. Kawano Y., Takaue Y., Watanabe T., Abe T., Okamoto Y., Iwai A., Iwai T., Watanabe A., Ito E., Makimoto A., Nakagawa R., Watanabe H., Sato J., Suenaga K., Suzuya H., Ohnishi T., Kanamaru S., Kaneko M., Kuroda Y. Effi cacy of the mobilization of peripheral blood stem cells by granulocyte colony-stimulating factor in pediatric donors. Cancer Res 1999;59:3321–4. PMID: 10416586.

30. Fu P., Bagai R.K., Meyerson H., Kane D., Fox R.M., Creger R.J., Cooper B.W., Gerson S.L., Laughlin M.J., Koc O.N., Lazarus H.M. Pre-mobilization therapy blood CD34+ cell count predicts the likelihood of successful hematopoietic stem cell mobilization. Bone Marrow Transplant 2006;38(3):189–96. doi: 10.1038/sj.bmt.1705431.

31. Empringham B., Chiang K.Y., Krueger J. Collection of hematopoietic stem cells and immune eff ector cells in small children. Transfus Apher Sci 2018;57(5):614–8. doi: 10.1016/j.transci.2018.10.004.

32. Курникова Е.Е., Кумукова И.Б., Гуз И.В., Хисматуллина Р.Д., Шаманская Т.В., Фадеева М.С., Глушкова С.Ю., Бриллиантова В.В., Варфоломеева С.Р., Трахтман П.Е. Результаты мобилизации, афереза и аутореинфузии гемопоэтических стволовых клеток у детей с нейробластомой: роль мониторинга количества CD34+ клеток в периферической крови. Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии 2017;16(1):28–39. doi: 10.24286/1726-1708. [Kurnikova E.E., Kumukova I.B., Guz I.V., Chismatullina R.D., Shamanskaya T.V., Fadeeva M.S., Glushkova S.Yu., Brilliantova V.V., Varfolomeyeva S.R., Trakhtman P.E. Results of mobilization, apheresis and autoreinfusion of hematopoietic stem cells in children with neuroblastoma: role of monitoring the count of CD34+ cells in peripheral blood. Voprosy gematologii/onkologii i immunopatologii v pediatrii = Pediatric Hematology/Oncology and Immunopathology 2017;16(1):28–39. (In Russ.)].

33. Xie Y., Yin T., Wiegraebe W., He X.C., Miller D., Stark D., Perko K., Alexander R., Schwartz J., Grindley J.C., Park J., Haug J.S., Wunderlich J.P., Li H., Zhang S., Johnson T., Feldman R.A. Detection of functional haematopoietic stem cell niche using real-time imaging. Nature 2009;457(7225):97–101. doi: 10.1038/nature07639.

34. Grupp S.A., Cohn S.L., Wall D., Reynolds P.C.; Hematopoietic Stem Cell Transplant Discipline and the Neuroblastoma Disease Committee, Children’s Oncology Group. Collection, storage, and infusion of stem cells in children with high-risk neuroblastoma: saving for a rainy day. Pediatr Blood Cancer 2006;46(7):719–22. PMID: 16429413.

35. Koc O.N., Gerson S.L., Cooper B.W., Laughlin M., Meyerson H., Kutteh L., Fox R.M., Szekely E.M., Tainer N., Lazarus H.M. Randomized cross-over trial of progenitor-cell mobilization: high-dose cyclophosphamide plus granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF) versus granulocytemacrophage colony-stimulating factor plus G-CSF. J Clin Oncol 2000;18(9):1824–30. doi: 10.1200/JCO.2000.18.9.1824.

36. Flomenberg N., Devine S.M., Dipersio J.F., Liesveld J.L., Rowley S.D., Vesole D.H., Badel K., Calandra G. The use of AMD3100 plus G-CSF for autologous hematopoietic progenitor cell mobilization is superior to G-CSF alone. Blood 2005;106(5):1867–74. doi: 10.1182/blood-2005-02-0468.

37. Miano M., Labopin M., Hartmann O., Angelucci E., Cornish J., Gluckman E., Locatelli F., Fischer A., Egeler R.M., Or R., Peters C., Ortega J., Veys P., Bordigoni P., Iori A.P., Niethammer D., Rocha V., Dini G.; Paediatric Diseases Working Party of the European Group for Blood and Marrow Transplantation. Haematopoietic stem cell transplantation trends in children over the last three decades: a survey by the paediatric diseases working party of the European Group for Blood and Marrow Transplantation. Bone Marrow Transplant 2007;39(2):89–99. doi: 10.1038/bmt.


Для цитирования:


Степанян Н.Г., Сидорова Н.В., Рубанская М.В., Тупицын Н.H., Матинян Н.В., Киргизов К.И., Варфоломеева С.Р. Оптимизация методов сбора периферических гемопоэтических стволовых клеток у детей с онкологическими заболеваниями: обзор литературы. Российский журнал детской гематологии и онкологии (РЖДГиО). 2020;7(2):78-85. https://doi.org/10.21682/2311-1267-2020-7-2-78-85

For citation:


Stepanyan N.G., Sidorova N.V., Rubanskaya M.V., Tupitsyn N.N., Matinyan N.V., Kirgizov K.I., Varfolomeeva S.R. Optimization of methods for collecting peripheral hematopoietic stem cells in children with cancer: literature review. Russian Journal of Pediatric Hematology and Oncology. 2020;7(2):78-85. (In Russ.) https://doi.org/10.21682/2311-1267-2020-7-2-78-85

Просмотров: 76


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2311-1267 (Print)
ISSN 2413-5496 (Online)