Применение малообъемного метода экстракорпоральной фотохимиотерапии. Описание клинических случаев
https://doi.org/10.21682/2311-1267-2024-11-4-98-103
- Р Р‡.МессенРТвЂВВВВВВВВжер
- РћРТвЂВВВВВВВВнокласснРСвЂВВВВВВВВРєРСвЂВВВВВВВВ
- LiveJournal
- Telegram
- ВКонтакте
- РЎРєРѕРїРСвЂВВВВВВВВровать ссылку
Полный текст:
Аннотация
Экстракорпоральный фотоферез (ЭКФ) доказал свою эффективность при лечении ряда заболеваний, включая острую и хроническую реакции «трансплантат против хозяина» (РТПХ) после аллогенной трансплантации гемопоэтических стволовых клеток. В стандартном исполнении ЭКФ требует лейкафереза для получения фракции мононуклеарных клеток. Возможность применения лейкафереза ограничена требованиями к сосудистому доступу и соматическим статусом больного.
В ФГБУ «НМИЦ ДГОИ им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России разработан и запатентован новый метод малообъемного ЭКФ (мо-ЭКФ), не требующий лейкафереза. В статье представлено описание 2 клинических случаев тяжелой рефрактерной РТПХ, при которой пациенты получали терапию методом мо-ЭКФ.
Об авторах
И. Б. КумуковаРоссия
Ирина Борисовна Кумукова: к.м.н., научный сотрудник; заведующий отделением трансфузиологии; доцент кафедры гематологии и трансфузиологии им. акад. И.А. Кассирского и А.И. Воробьева
117997, Москва, ул. Саморы Машела, 1
108814, Москва, пос. Коммунарка, ул. Сосенский стан, 8
125993, Москва, ул. Баррикадная, 2/1, стр. 1
Е. Е. Курникова
Россия
к.м.н., врач-трансфузиолог
117997, Москва, ул. Саморы Машела, 1
П. Е. Трахтман
Россия
д.м.н., заведующий отделением трансфузиологии заготовки и процессинга гемопоэтических стволовых клеток; профессор кафедры гематологии и трансфузиологии им. акад. И.А. Кассирского и А.И. Воробьева
117997, Москва, ул. Саморы Машела, 1
125993, Москва, ул. Баррикадная, 2/1, стр. 1
Список литературы
1. Padmanabhan A., Connelly-Smith L., Aqui N., Balogun R.A., Klingel R., Meyer E., Pham H.P., Schneiderman J., Witt V., Wu Y., Zantek N.D., Dunbar N.M., Schwartz G.E.J. Guidelines on the Use of Therapeutic Apheresis in Clinical Practice - Evidence-Based Approach from the Writing Committee of the American Society for Apheresis: The Eighth Special Issue. J Clin Apher. 2019;34(3):171-354. https://doi.org/10.1002/jca.21705.
2. Кумукова И.Б., Трахтман П.Е., Курникова Е.Е. Экстракорпоральный фотоферез: как, зачем и для кого? Вопросы гематологии/ онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2023;22(2):159-65. https://doi.org/10.24287/1726-1708-2023-22-2-159-165.
3. Hackstein H., Misterek J., Nockher A., Reiter A., Bein G., Woessmann W. Mini buffy coat photopheresis for children and critically ill patients with extracorporeal photopheresis contraindications. Transfusion. 2009;49(11):2366-73. https://doi.org/10.1111/j.1537-2995.2009.02289.x.
4. van Iperen H.P., Beijersbergen van Henegouwen G.M. Clinical and mechanistic aspects of photopheresis. J Photochem Photobiol B. 1997;39(2):99-109. https://doi.org/10.1016/s1011-1344(96)07432-5.
5. Schreiner T., Gaczkowski A., Scharffetter-Kochanek K., Borberg H. Small-scale extracorporeal photopheresis for the treatment of cutaneous T-cell lymphoma: A report of 3 cases. Transfus Apher Sci. 2005;32(2):197-203. https://doi.org/10.1016/j.transci.2004.10.020.
6. Berger C., Hoffmann K., Vasquez J.G., Mane S., Lewis J., Filler R., Lin A., Zhao H., Durazzo T., Baird A., Lin W., Foss F., Christensen I., Girardi M., Tigelaar R., Edelson R. Rapid generation of maturationally synchronized human dendritic cells:contribution to the clinical efficacy of extracorporeal photochemotherapy. Blood. 2010;116:4838-47. https://doi.org/10.1182/blood-2009-11-256040.
7. Gatza E., Rogers C.E., Clouthier S.G., Lowler K.P. Tawara I., Liu C., Reddy P., Ferrara J.L. Extracorporeal photopheresis reverses experimental graft-versus-host disease through regulatory T cells. Blood. 2008;112:1515-21. https://doi.org/10.1182/blood-2007-11-125542.
8. Maeda A., Schwarz A., Bullinger A., Morita A., Peritt D., Schwarz T. Experimental extracorporeal photopheresis inhibits the sensitization and effector phases of contact hypersensitivity via two mechanisms: generation of IL-10 and induction of regulatory T cells. J Immunol. 2008;181:5956-62. https://doi.org/10.4049/jimmunol.181.9.5956.
9. Celli S., Day M., Müller A.J., Molina-Paris C., Lythe G., Bousso P. How many dendritic cells are required to initiate a T-cell response? Blood. 2012;120:3945-8. https://doi.org/10.1182/blood-2012-01-408260.
10. Кумукова И.Б., Курникова Е.Е., Илюшина М.А., Трахтман П.Е. Мини-фотоферез - экстракорпоральный фотоферез, не требующий лейкафереза: опыт клинического использования. Педиатрия. Журнал им. Г.Н. Сперанского. 2021;100(3):69-76.
11. Hackstein H., Amoros J.J., Bein G., Woessmann W. Successful use of miniphotopheresis for the treatment of graft-versus-host disease. Transfusion. 2014;54(8):2022-7. https://doi.org/10.1111/trf.12596.
Рецензия
Для цитирования:
Кумукова И.Б., Курникова Е.Е., Трахтман П.Е. Применение малообъемного метода экстракорпоральной фотохимиотерапии. Описание клинических случаев. Российский журнал детской гематологии и онкологии (РЖДГиО). 2024;11(4):98-103. https://doi.org/10.21682/2311-1267-2024-11-4-98-103
For citation:
Kumukova I.B., Kurnikova E.E., Trakhtman P.E. Using a low-volume method of extracorporeal photochemotherapy. Description of clinical cases. Russian Journal of Pediatric Hematology and Oncology. 2024;11(4):98-103. (In Russ.) https://doi.org/10.21682/2311-1267-2024-11-4-98-103
ISSN 2413-5496 (Online)