Лучевой дерматит: современные представления о патогенезе, принципах профилактики и лечения
Т. С. Белышева,
Т. Т. Валиев,
Е. А. Шатохина,
В. А. Григоренко,
А. С. Полонская,
К. И. Киргизов,
С. Р. Варфоломеева https://doi.org/10.21682/2311-1267-2022-9-4-81-87
Аннотация
При проведении лучевой терапии (ЛТ) отмечается высокая частота дерматологических нежелательных явлений. Лучевой дерматит является основным побочным эффектом со стороны кожи при проведении ЛТ. В статье рассмотрены современные представления о патогенезе лучевого дерматита, актуальные подходы к профилактике и лечению данного нежелательного явления.
Об авторах
Т. С. Белышева
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Блохина» Минздрава России
Россия
Россия
Татьяна Сергеевна Белышева, д. м. н., ведущий научный сотрудник
НИИ детской онкологии и гематологии
научно-консультативное отделение
115478
Каширское шоссе, 23
Москва
Т. Т. Валиев
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Блохина» Минздрава России
Россия
Россия
д. м. н., заведующий отделением
НИИ детской онкологии и гематологии
отделение детской онкологии и гематологии (химиотерапия гемобластозов) № 1
115478
Каширское шоссе, 23
Москва
Е. А. Шатохина
ФГБУ ДПО «Центральная государственная медицинская академия» Управления делами Президента Российской Федерации; Медицинский научно-образовательный центр Московского государственного университета имени М. В. Ломоносова
Россия
Россия
д. м. н., профессор
кафедра дерматовенерологии и косметологии
121359
ул. Маршала Тимошенко, 19, стр. 1А
119192
Ломоносовский просп., 27, корп. 10
Москва
В. А. Григоренко
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Блохина» Минздрава России
Россия
Россия
врач-радиотерапевт, заведующий отделением
НИИ детской онкологии и гематологии
радиологическое отделение
115478
Каширское шоссе, 23
Москва
А. С. Полонская
ФГБУ ДПО «Центральная государственная медицинская академия» Управления делами Президента Российской Федерации
Россия
Россия
ассистент
кафедра дерматовенерологии и косметологии
121359
ул. Маршала Тимошенко, 19, стр. 1А
Москва
К. И. Киргизов
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Блохина» Минздрава России
Россия
Россия
к. м. н., заместитель директора по научной и образовательной работе
НИИ детской онкологии и гематологии
115478
Каширское шоссе, 23
Москва
С. Р. Варфоломеева
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Блохина» Минздрава России
Россия
Россия
д. м. н., профессор, директор
НИИ детской онкологии и гематологии
115478
Каширское шоссе, 23
Москва
Список литературы
1. Lacouture M. E. Dermatologic principles and practice in oncology: conditions of the skin, hair, and nails in cancer patients. John Wiley & Sons, 2014.
2. Salvo N., Barnes E., van Draanen J., Stacey E., Mitera G., Breen D., Giotis A., Czarnota G., Pang J., De Angelis C. Prophylaxis and management of acute radiation-induced skin reactions: a systematic review of the literature. Curr Oncol. 2010; 17 (4): 94–112. doi: 10.3747/co.v17i4.493.
3. Janko M., Ontiveros F., Fitzgerald T. J., Deng A., DeCicco M., Rock K. L. IL-1 generated subsequent to radiation-induced tissue injury contributes to the pathogenesis of radiodermatitis. Radiat Res. 2012; 178 (3): 166–72. doi: 10.1667/rr3097.1.
4. Lamkanfi M. Emerging inflammasome effector mechanisms. Nat Rev Immunol. 2011; 11 (3): 213–20. doi: 10.1038/nri2936.
5. Allam R., Lawlor K. E., Yu E. C. Mitochondrial apoptosis is dispensable for NLRP3 infl ammasome activation but non-apoptotic caspase-8 is required for infl ammasome priming. EMBO Rep. 2014; 15 (9): 982–90. doi: 10.15252/embr.201438463.
6. Pohlers D., Brenmoehl J., Löffler I. TGF-beta and fibrosis in diff erent organs – molecular pathway imprints. Biochim Biophys Acta. 2009; 1792 (8): 746–56. doi: 10.1016/j.bbadis.2009.06.004.
7. Flanders K. C. Smad 3 as a mediator of the fi brotic response. Int J Exp Pathol. 2004; 85 (2): 47–64. doi: 10.1111/j.0959-9673.2004.00377.x.
8. Martin D. J., Garske J. P., Davis M. K. Relation of the therapeutic alliance with outcome and other variables: a meta-analytic review. J Consult Clin Psychol. 2000; 68 (3): 438–50. PMID: 10883561.
9. Vorotnikova E., Rosenthal R. A., Tries M., Doctrow S. R., Braunhut S. J. Novel synthetic SOD / catalase mimetics can mitigate capillary endothelial cell apoptosis caused by ionizing radiation. Radiat Res. 2010; 173 (6): 748–59. doi: 10.1667/RR1948.1.
10. Dent P., Yacoub A., Fisher P. B., Hagan M. P., Grant S. MAPK pathways in radiation responses. Oncogene. 2003; 22 (37): 5885–96. doi: 10.1038/sj.onc.1206701.
11. Drummond G. R., Selemidis S., Griendling K. K., Sobey C. G. Combating oxidative stress in vascular disease: NADPH oxidases as therapeutic targets. Nat Rev Drug Discov. 2011; 10 (6): 453–71. doi: 10.1038/nrd3403.
12. Panday A., Sahoo M. K., Osorio D., Batra S. NADPH oxidases: an overview from structure to innate immunity-associated pathologies. Cell Mol Immunol. 2015; 12 (1): 5–23. doi: 10.1038/cmi.2014.89.
13. Aktan F. iNOS-mediated nitric oxide production and its regulation. Life Sci. 2004; 75 (6): 639–53. doi: 10.1016/j.lfs.2003.10.042.
14. Ohta S., Matsuda S., Gunji M., Kamogawa A. The role of nitric oxide in radiation damage. Biol Pharm Bull. 2007; 30 (6): 1102–7. doi: 10.1248/bpb.30.1102.
15. Frey B., Rückert M., Deloch L. Immunomodulation by ionizing radiation-impact for design of radio-immunotherapies and for treatment of infl ammatory diseases. Immunol Rev. 2017; 280 (1): 231–48. doi: 10.1111/imr.12572.
16. Yahyapour R., Amini P., Rezapoor S. Targeting of Infl ammation for Radiation Protection and Mitigation. Curr Mol Pharmacol. 2018; 11 (3): 203–10. doi: 10.2174/1874467210666171108165641.
17. Gorski D. H., Beckett M. A., Jaskowiak N. T. Blockage of the vascular endothelial growth factor stress response increases the antitumor effects of ionizing radiation. Cancer Res. 1999; 59 (14): 3374–8. PMID: 10416597.
18. Tong R. T., Boucher Y., Kozin S. V., Winkler F., Hicklin D. J., Jain R. K. Vascular normalization by vascular endothelial growth factor receptor 2 blockade induces a pressure gradient across the vasculature and improves drug penetration in tumors. Cancer Res. 2004; 64 (11): 3731–6. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-04-0074.
19. Wendt T. G., Grabenbauer G. G., Rödel C. M. Simultaneous radiochemotherapy versus radiotherapy alone in advanced head and neck cancer: a randomized multicenter study. J Clin Oncol. 1998; 16 (4): 1318–24. doi: 10.1200/JCO.1998.16.4.1318.
20. Swift M., Morrell D., Cromartie E., Chamberlin A. R., Skolnick M. H., Bishop D. T. The incidence and gene frequency of ataxia-telangiectasia in the United States. Am J Hum Genet. 1986; 39 (5): 573–83. PMID: 3788973.
21. Iannuzzi C. M., Atencio D. P., Green S., Stock R. G., Rosenstein B. S. ATM mutations in female breast cancer patients predict for an increase in radiation-induced late effects. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2002; 52 (3): 606–13. doi: 10.1016/s0360-3016(01)02684-0.
22. Meghrajani C. F., Co H. C., Ang-Tiu C. M., Roa F. C. Topical corticosteroid therapy for the prevention of acute radiation dermatitis: a systematic review of randomized controlled trials. Expert Rev Clin Pharmacol. 2013; 6 (6): 641–9. doi: 10.1586/17512433.2013.841079.
23. McQuestion M. Evidence-based skin care management in radiation therapy. Semin Oncol Nurs. 2006; 22 (3): 163–73. doi: 10.1016/j.soncn.2006.04.004.
24. Frederick D. M., Renato G. P. Radiobiology and radiation effects. In: Wolff K., Goldsmith L. A., Katz S. I., Gilchrest B. A., Paller A. S., Leffell D. J., eds. Fitzpatrick’s dermatology in general medicine. 7<sup>th</sup> ed. New York: McGraw-Hill, 2008. Pp. 858–862.
25. Bray F. N., Simmons B. J., Wolfson A. H., Nouri K. Acute and Chronic Cutaneous Reactions to Ionizing Radiation Therapy. Dermatol Ther (Heidelb). 2016; 6 (2): 185–206. doi: 10.1007/s13555-016-0120-y.
26. Bernier J., Domenge C., Ozsahin M. Postoperative irradiation with or without concomitant chemotherapy for locally advanced head and neck cancer. N Engl J Med. 2004; 350 (19): 1945–52. doi: 10.1056/NEJMoa032641.
27. Madison K. C. Barrier function of the skin: “la raison d'être” of the epidermis. J Invest Dermatol. 2003; 121 (2): 231–41. doi: 10.1046/j.1523-1747.2003.12359.x.
28. Porock D., Kristjanson L., Nikoletti S., Cameron F., Pedler P. Predicting the severity of radiation skin reactions in women with breast cancer. Oncol Nurs Forum. 1998; 25 (6): 1019–29. PMID: 9679261.
29. Cox J. D., Stetz J., Pajak T. F. Toxicity criteria of the Radiation Therapy Oncology Group (RTOG) and the European Organization for Research and Treatment of Cancer (EORTC). Int J Radiat Oncol Biol Phys. 1995; 31 (5): 1341–6. doi: 10.1016/0360-3016(95)00060-C.
30. Chan R. J., Webster J., Chung B., Marquart L., Ahmed M., Garantziotis S. Prevention and treatment of acute radiation-induced skin reactions: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. BMC Cancer. 2014; 14: 53. doi:10.1186/1471-2407-14-53.
31. Bolderston A., Lloyd N. S., Wong R. K., Holden L., Robb-Blenderman L.; Supportive Care Guidelines Group of Cancer Care Ontario Program in Evidence-Based Care. The prevention and management of acute skin reactions related to radiation therapy: a systematic review and practice guideline. Support Care Cancer. 2006; 14 (8): 802–17. doi: 10.1007/s00520-006-0063-4.
32. Wong R. K., Bensadoun R. J., Boers-Doets C. B. Clinical practice guidelines for the prevention and treatment of acute and late radiation reactions from the MASCC Skin Toxicity Study Group. Support Care Cancer. 2013; 21 (10): 2933–48. doi: 10.1007/s00520-013-1896-2.
33. Пономаренко Г. Н. Общая физиотерапия: учебник / Г. Н. Пономаренко. – 5-е изд., перераб. и доп. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2013. – 365 с.
34. Elad S., Cheng K. K. F., Lalla R. V. MASCC/ISOO clinical practice guidelines for the management of mucositis secondary to cancer therapy [published correction appears in Cancer. 2021; 127 (19): 3700]. Cancer. 2020; 126 (19): 4423–31. doi: 10.1002/cncr.33100.
35. Tran T. N., Hoang M. V., Phan Q. A. Fractional epidermal grafting in combination with laser therapy as a novel approach in treating radiation dermatitis. Semin Cutan Med Surg. 2015; 34 (1): 42–7. doi: 10.12788/j.sder.2015.0141.
36. Saei S., Sahebnasagh A., Ghasemi A. Efficacy of sucralfate ointment in the prevention of acute proctitis in cancer patients: A randomized controlled clinical trial. Caspian J Intern Med. 2020; 11 (4): 410–8. doi: 10.22088/cjim.11.4.410.
37. Kouvaris J. R., Kouloulias V. E., Plataniotis G. A., Kokakis J. D., Vlahos L. J. Topical granulocyte-macrophage colony-stimulating factor for radiation dermatitis of the vulva. Br J Dermatol. 2001; 144 (3): 646–7. doi: 10.1046/j.1365-2133.2001.04115.x.
38. Dunst J., Semlin S., Pigorsch S., Müller A. C., Reese T. Intermittent use of amifostine during postoperative radiochemotherapy and acute toxicity in rectal cancer patients. Strahlenther Onkol. 2000; 176 (9): 416–21. doi: 10.1007/pl00002350.
39. Viswanath L., Bindhu J., Krishnamurthy B., Suresh K. P. Granulocyte-Colony Stimulating Factor (G-CSF) accelerates healing of radiation induced moist desquamation of the skin. Klin Onkol. 2012; 25 (3): 199–205. PMID: 22724569.
40. Common terminology criteria for adverse events (CTCAE) version 4.0 (May 28, 2009) [Electronic resource: https://evs.nci.nih.gov/ftp1/CTCAE/CTCAE_4.03/CTCAE_4.03_2010-06-14_QuickReference_8.5x11.pdf]. US Department of Health and Human Services; National Institute of Health, National Cancer Institute v.4.03. 2010.
Рецензия
При поддержке: Исследование проведено без спонсорской поддержки
Для цитирования:
Белышева Т.С., Валиев Т.Т., Шатохина Е.А., Григоренко В.А., Полонская А.С., Киргизов К.И., Варфоломеева С.Р. Лучевой дерматит: современные представления о патогенезе, принципах профилактики и лечения. Российский журнал детской гематологии и онкологии (РЖДГиО). 2022;9(4):81-87. https://doi.org/10.21682/2311-1267-2022-9-4-81-87
For citation:
Belysheva T.S., Valiev T.T., Shatokhina E.A., Grigorenko V.A., Polonskaya A.S., Kirgizov K.I., Varfolomeeva S.R. Radiation dermatitis: current view on pathogenesis, principles of profilaxis and treatment. Russian Journal of Pediatric Hematology and Oncology. 2022;9(4):81-87. (In Russ.) https://doi.org/10.21682/2311-1267-2022-9-4-81-87
Просмотров: 251
Послать статью по эл. почте 